專為大分子設(shè)計：HIC-Butyl色譜柱在蛋白分離與檢測中的優(yōu)勢！
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如果您嘗試用為小分子設(shè)計的傳統(tǒng)反相色譜柱(C18等)去分離蛋白質(zhì)，結(jié)果往往令人沮喪：回收率極低、峰形拖尾嚴重、甚至導致蛋白失活。這是因為生物大分子(如單克隆抗體、各種治療性蛋白)具有體積龐大、結(jié)構(gòu)復(fù)雜、表面性質(zhì)多樣等特點，它們需要被“特殊對待”。恒譜生BioM系列?HIC-Butyl疏水色譜柱，從底層設(shè)計之初，就只為做好一件事：高效、溫和地分離與檢測生物大分子。
一、大分子分離的三大核心訴求與HIC-Buty的響應(yīng)
一款優(yōu)秀的、專用于大分子的色譜柱，必須滿足三個核心訴求：可及性、活性保持性和分辨率。HIC-Buty是如何一一實現(xiàn)的?
1. 可及性：打開大分子的“通行之門”
大分子無法進入比自身尺寸還小的孔道。恒譜生HIC-Buty疏水色譜柱采用的1000?（100納米）超大孔徑，就如同為龐大的蛋白分子打開了一扇寬敞的大門。這意味著抗體(流體動力學直徑約10nm)等分子可以輕松地進入填料顆粒的內(nèi)部，與大量的固定相接觸位點發(fā)生相互作用。這不僅避免了篩分效應(yīng)導致的樣品排阻和損失，更充分利用了填料的比表面積，為實現(xiàn)高柱效和高載量奠定了物理基礎(chǔ)。
2. 活性保持性：溫和的相互作用哲學
與使用強有機溶劑和酸性流動相、容易使蛋白變性的反相色譜(RPLC)不同，HIC是一種基于天然構(gòu)象的分離技術(shù)。HIC-Buty利用高鹽濃度促進蛋白表面疏水 patch 與丁基固定相的可逆結(jié)合，再通過逐步降低鹽濃度的線性梯度進行洗脫。整個過程在接近生理條件的溫和水性緩沖液中進行，無需使用變性劑。這種“溫柔”的分離模式，能夠最大限度地維持蛋白的天然構(gòu)象、生物活性和可溶性，確保您的分離結(jié)果具有真實的生物學意義。極低的非特異性吸附進一步保障了高回收率，讓您對定量結(jié)果的準確性充滿信心。
3. 分辨率：洞察細微差異的“火眼金睛”
生物藥的效力與安全性，往往取決于其微妙的異質(zhì)性，例如：
單克隆抗體的電荷變異體與疏水變異體
抗體片段（如Fab, Fc）的分布
翻譯后修飾（PTMs），如甲硫氨酸氧化。甲硫氨酸氧化后會增加分子的疏水性。
HIC-Buty的高選擇性?正是為此而生。其精確鍵合的丁基鏈，對蛋白表面疏水性的微小變化極為敏感。氧化的蛋白變體會比天然形式具有稍長的保留時間，從而被有效分離。這種基于疏水性的精細分辨能力，與基于電荷的離子交換色譜(IEX)形成完美互補，為您提供了剖析蛋白異質(zhì)性的另一維度利器。
二、超越ADC：HIC-Buty的廣泛應(yīng)用場景
雖然ADC分析是其明星應(yīng)用，但HIC-Buty的優(yōu)勢遠不止于此：
mAb純度與穩(wěn)定性研究：?監(jiān)控加速穩(wěn)定性試驗中疏水變異體的生成，評估藥物儲存過程中的降解途徑。
酶與重組蛋白的分離：?純化與鑒定結(jié)構(gòu)復(fù)雜的重組蛋白，分離不同聚合狀態(tài)的蛋白。
膜蛋白研究輔助：?雖然挑戰(zhàn)巨大，但HIC技術(shù)常被用于膜蛋白提取后的初步純化。
方法開發(fā)小貼士
要充分發(fā)揮HIC-Buty的潛力，方法開發(fā)是關(guān)鍵。我們建議您重點關(guān)注：
鹽類型：?通常使用硫酸銨、氯化鈉等。不同種類的鹽對疏水作用的促進效果(離液序列)不同。
鹽濃度與梯度：?起始鹽濃度和梯度斜率是影響分離選擇性和分辨率的首要因素，需要進行系統(tǒng)優(yōu)化。
pH值與緩沖體系：?在pH 2-8的耐受范圍內(nèi)，pH值會影響蛋白的構(gòu)象和表面疏水性，可作為微調(diào)分離的杠桿。
溫度：?適當提高柱溫(如25-40°C)可以改善傳質(zhì)，有時能獲得更尖銳的峰形。
恒譜生HIC-Butyl疏水色譜柱，不是一款通用色譜柱的簡單變體，而是一款真正為大分子世界量身定制的專業(yè)工具。從1000?的大孔徑保障可及性，到溫和的HIC原理保持活性，再到高選擇性分辨細微差異，它的每一個設(shè)計細節(jié)都直指生物大分子分離的核心挑戰(zhàn)。選擇HIC-Buty，就是選擇一種更專業(yè)、更可靠的方式，去窺探和掌控您手中蛋白產(chǎn)品的質(zhì)量屬性。
發(fā)布于: 2025-11-19